如何選擇合適的陽性對照？
陽性對照的基本組成應該盡量與檢測樣本的組成一致，一般陽性對照多以含蛋白保護劑的緩沖液為基質，加入一定量的待檢物質。
如何選擇合適的陰性對照？
陰性對照的基本組成也應該盡量與檢測樣本的組成一致，先行檢測確定其中不含待檢物質。比如，檢測人血清標本時，陰性對照應該選擇正常人血清；檢測免疫動物血清中抗體效價時，陰性對照應該選擇該動物的免疫前血清。
大鼠山梨醇脫氫酶（SDH）ELISA試劑盒如何選擇優化的包被條件？
1、包被抗原的選擇
包被抗原可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類。天然蛋白需經純化才能用直接吸附法包被，對于含雜質較多的抗原可以采用間接捕獲法包被（先用能夠與目的抗原反應的物質如抗體直接吸附在酶標板上，再通過特異性反應使抗原固相化）。經純化的重組蛋白一般皆可直接包板。
小分子抗原比如多肽以及一些小分子有機化合物，由于分子量太小，往往難于直接吸附在酶標板上，一般都先使其與無關蛋白質如BSA等偶聯，偶聯物吸附于固相載體上。
2、包被液的選擇
一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液，如果包被的抗原在堿性條件下不穩定的話，也可以使用pH7.2的磷酸鹽緩沖液。
3、包被溫度的選擇
通常是4-8度條件下過一夜或者37度保溫2小時，我們強烈建議4-8度條件下包被，有利于蛋白活性的保持。
4、包被濃度的選擇
包被的適濃度隨固相載體和包被物的性質變化，一般蛋白質的包被濃度為1-5ug/ml，要明確針對特定包被抗原的合適包被濃度需要通過實驗來確定。
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